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知識講解:細(xì)胞培養(yǎng)的步驟和注意事項(xiàng)
1:細(xì)胞復(fù)蘇
低溫保存的細(xì)胞從液氮中取出后,在37℃的水浴中不斷搖晃,以促進(jìn)其融化。將解凍后的細(xì)胞移入離心管,加入37℃(胎牛血清約10%)預(yù)熱的DMEM培養(yǎng)基中,輕輕吹掃離心,500克離心2分鐘,丟棄上清液。
加入DMEM清洗,并丟棄上清液。加入DMEM全培養(yǎng)基,輕輕吹勻,制成細(xì)胞懸液,接種于皿/瓶中,在含5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
2:細(xì)胞通道
當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到80%~90%(早產(chǎn)不足,細(xì)胞條件不好,1:2~1:10或以上比例傳代,一般1:3~1:5細(xì)胞發(fā)生,即從細(xì)胞接種到分離再培養(yǎng)的一段時間內(nèi),非細(xì)胞有絲分裂的次數(shù)),取出完整培養(yǎng)基,洗滌兩次1x PBS。
加入胰蛋白酶(注:消化液覆蓋細(xì)胞的最佳量,最佳消化溫度為37℃。顯微鏡下觀察細(xì)胞:倒置顯微鏡下觀察消化細(xì)胞。如果細(xì)胞質(zhì)收縮,細(xì)胞不再連接成碎片,說明此時細(xì)胞的消化是合適的),并將其放入細(xì)胞培養(yǎng)箱中約2-3分鐘。
加入適量DMEM全培養(yǎng)基停止胰蛋白酶消化,移入離心管離心2分鐘,棄去上清液,然后加入DMEM全培養(yǎng)基洗滌,棄去上清液。
加入DMEM全培養(yǎng)基,輕輕吹勻,取10μL計(jì)數(shù),按要求的細(xì)胞體積在含5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。
3:細(xì)胞冷凍保存
當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到80%~90%時,去除全培養(yǎng)基,用1x PBS洗滌兩次。加入胰蛋白酶消化,放入細(xì)胞培養(yǎng)箱約2-3分鐘。加入DMEM全培養(yǎng)基停止胰蛋白酶消化,移入離心管,離心500g,離心2min,棄去上清液,然后加入DMEM全培養(yǎng)基洗滌,棄去上清液。加入LML凍存液(90%胎牛血清,10%二甲基亞砜)。一般來說,血清含量可以在10%到90%之間調(diào)節(jié)。一方面在凍存液中加入血清可以為細(xì)胞提供營養(yǎng),另一方面可以提供蔗糖、白蛋白等不滲透的保護(hù)物質(zhì),在凍存過程中更好地保護(hù)細(xì)胞。放入低溫保存管(管內(nèi)加入異丙醇,以保證降溫速度),立即放入4℃冰箱內(nèi)冷凍30分鐘,然后放入-20℃冰箱30分鐘,再放入-80℃冰箱過夜。
第二天放入液氮中,至少可以保存兩年。如果沒有,可以保存三個月。
細(xì)胞冷凍復(fù)蘇的原理是:緩慢冷凍和快速解凍,這樣更有利于保持細(xì)胞的活力。不加任何保護(hù)劑的細(xì)胞低溫保存會導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生冰晶,引起細(xì)胞內(nèi)的機(jī)械損傷、滲透壓、pH值和電解質(zhì)的變化,進(jìn)而導(dǎo)致細(xì)胞死亡。
4:注意事項(xiàng)
(1) 預(yù)熱培養(yǎng)液:將配制好的含培養(yǎng)液、PBS和胰蛋白酶的瓶子放入37℃水浴中預(yù)熱;
(2) 用75%酒精擦拭超凈工作臺和紫外線照射的手;
(3) 正確放置使用過的設(shè)備:保證足夠的操作空間,既方便操作又減少污染;
(4) 酒精燈:注意火焰不要太小;
(5) 嚴(yán)格無菌操作;
(6) 貼壁細(xì)胞的消化是中等的:消化時間受多種因素的影響,如消化液的種類、制備時間和加入培養(yǎng)瓶中的量。在消化過程中,應(yīng)注意培養(yǎng)細(xì)胞形態(tài)的變化。一旦細(xì)胞質(zhì)收縮,連接變松,或有碎片漂浮的跡象,消化應(yīng)立即終止;
(7) 傳代細(xì)胞的所有操作應(yīng)盡可能靠近酒精燈火焰。最好一次只操作一個電池,每個電池使用一套設(shè)備。避免交叉感染;
(8) 每次打開或關(guān)閉細(xì)胞瓶口時,都需要在酒精燈上消毒
細(xì)胞培養(yǎng) 本生一直視質(zhì)量控制為企業(yè)的生命,追求企業(yè)競爭力的不斷提升。公司在經(jīng)營中始終秉承:遵紀(jì)守法,嚴(yán)于律己,寬仁以待,敢于承擔(dān)的企業(yè)精神作為標(biāo)準(zhǔn),以過硬的質(zhì)量和優(yōu)良的服務(wù)來維護(hù)和拓展市場,較大限度的滿足客戶的需求。與客戶的共贏,是我們的發(fā)展目標(biāo)。本生!您信任的合作伙伴。我們愿與您真誠合作,共創(chuàng)美好的未來。
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